影响因子9.043丨分享一种基于RPA-CRISPR/Cas12a的mcr-1检测方法
研究背景
质粒介导的可移动粘杆菌素耐药酶(mobilized colistin resistance,mcr-1)基因可导致耐药株的快速传播,给人类感染的治疗带来极大威胁。本研究将RPA与CRISPR/Cas12a系统相结合,建立了一种新的快速检测mcr-1基因的方法,命名为RPA-CRISPR/Cas12a,并阐述了该方法在无菌培养和模拟样品中的特异性和敏感性。
图1. 用于mcr-1检测的RPA-CRISPR/Cas12a检测方法概述
研究思路和结果
· 基于RPA-CRISPR/Cas12a的mcr-1检测
含有PAM位点(TTTC)的目标基因段被RPA试剂盒在37℃的等温条件下扩增(图1,步骤1和2)。由重组酶和特异性引物结合形成的重组酶-引物复合物可以在双链DNA模板中寻找同源序列。当模板的特异性序列被识别后,链式交换反应将被启动,目标片段将在DNA聚合酶的作用下被成指数级扩增。在检测阶段,gRNA-CRISPR/Cas12a复合物通过PAM位点识别目标序列(图1,步骤3),成功激活效应分子Cas12a。然后,被激活的Cas12a蛋白切割目标序列,同时在反应体系中实现探针(用荧光团标记的ssDNA)的非特异性反式切割(图1,步骤4至6)。最后,荧光信号被释放出来,可以作为检测结果的指标被收集。
RPA-CRISPR/Cas12a检测的整个诊断过程,包括基因组提取(15分钟)、RPA反应(30分钟)、CRISPR/Cas12a裂解(5分钟)和荧光检测(10分钟),可以在1小时内完成(图2)。
图2. 用于mcr-1检测的RPA-CRISPR/Cas12a工作流程示意图
· RPA-CRISPR/Cas12a系统对mcr-1的敏感度和特异性评估
使用参考菌株(E. fergusonii WH-ZX154)的连续稀释液评估了RPA-CRISPR/Cas12a系统的检测极限。CRISPR-mcr-1检测按上述方法执行,并通过检测荧光信号获得结果。最后,通过三次平行试验,该系统甚至可以稳定地检测420 fg的质粒DNA。为了分析RPA-CRISPR/Cas12a系统的特异性,提取了携带各种抗性基因(KPC-2、NDM-1、IMP-26、OXA-181、rmtB、qnrS1、TEM-1B和sul1)菌株的DNA。与这些非mcr-1物种相比,只在产生mcr-1的样本中检测到阳性信号。RPA-CRISPR/Cas12a技术的阳性预测值(PPV)、阴性预测值(NPV)、敏感性和特异性都是100%。因此,开发的RPA-CRISPR/Cas12a系统可以专门监测mcr-1基因。
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参考文献:
Gong L, Jin ZJ, Liu E, et al. Highly Sensitive and Specific Detection of Mobilized Colistin Resistance Gene mcr-1 by CRISPR-Based Platform[J]. Microbiol Spectr. 2022 Oct 26;10(5):e0188422.